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點擊次數(shù):6729 發(fā)布時間:2021/8/9 11:25:14
注意事項
1. 選擇適當?shù)眉毎臃N濃度和培養(yǎng)時間。
2. 設置調零孔(只加培養(yǎng)基100ul、MTT10ul、二甲基亞砜100ul)。
3. 設置空白孔(細胞、藥物溶解介質、培養(yǎng)液共100ul、10ulMTT 、100ul二甲基亞砜)。
4. MTT實驗吸光度zui后要在0-0.7之間,超出這個范圍就不是直線關系。
5. 96孔板邊緣32孔用無菌PBS填充,因為邊緣的32孔中水分蒸發(fā)很快,藥物易被濃縮,對實驗影響大。同時加入PBS液填充后,可以一定程度上保持中間孔的水分。
6. 防止藥物與MTT反應。
如果96孔板中加入了具有氧化還原性的藥物,比如谷胱甘肽、Vit E、VitC,那建議用PBS將細胞洗洗,否則這些藥物會將MTT還原成棕褐色沉淀,這種效果可能是不需要的。
7. 吸收值分析
在理想的MTT實驗中,如果是細胞抑制實驗,不加藥物處理的空白組的吸收值應該在0.8-1.2左右,太小檢測誤差占的比例較多,太大吸收值可能已經超出線性范圍。這個原理在朗伯-比爾定律中有解釋。
8. 培養(yǎng)過程中換液
100ul的培養(yǎng)液對于10的4~5次方的增殖期細胞來說,很難維持50h以上,如果營養(yǎng)不夠的話,細胞會由增殖期漸漸趨向G0期而趨于靜止,影響結果。如果培養(yǎng)時間長,在48h應該換液一次。
9. 避免血清干擾
高的血清物質會影響試驗孔的光吸收值。由于試驗本底增加,會試驗敏感性。因此,一般選小于10%胎牛血清的培養(yǎng)液進行。在呈色后,盡量吸凈培養(yǎng)孔內殘余培養(yǎng)液。
10. 判斷污染
如加入MTT后都有個別孔立即變?yōu)樗{黑色,則污染的可能性極大。在加MTT可以先在鏡下觀察,看看是否有孔染菌,染菌的孔常常是臨近的。
11. 加DMSO要把液體小心吸掉
但培養(yǎng)液里的紫色結晶可能會吸去,可在這之先用平板離心機離心96孔板,2000r,5分鐘,然后吸掉上清(如果是懸浮細胞,則推薦此法,懸浮細胞要離心2500rpm×10min.且其做MTThao用圓底型96孔板,清除上清時注意不要把下面的結晶顆粒吸掉。對于貼壁細胞,可以試著將96孔板傾斜30度角,然后用槍尖慢慢吸。
12. MTT法只能用來檢測細胞相對數(shù)和相對活力,但不能測定細胞絕對數(shù)。在用酶標儀檢測結果的時候,為了baozheng實驗結果的線性,MTT 吸光度zui好在0-0.7 范圍內。MTT一般zui好現(xiàn)用現(xiàn)配,過濾后4ºC避光保存兩周內有效,或配制成5mg/ml保存在-20度chang期保存,避免反復凍融,zui好小劑量分裝,用避光袋或是黑紙、錫箔紙包住避光以免分解。一般都把MTT粉分裝在EP管里,用的時候現(xiàn)配,直接往培養(yǎng)板中加,沒必要一下子配那么多,尤其當MTT變?yōu)榛揖G色時就絕對不能再用了。MTT有致癌性,用的時候小心,有條件zui好帶那種透明的簿膜手套.配成的MTT需要無菌,MTT對菌很敏感;往96孔板加時不避光也沒有關系,畢竟時間較短,或者不放心的時候可以把操作臺上的照明燈關掉。
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